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ELISA實驗:標準品稀釋步驟指南
更新時間:2025-09-11瀏覽:281次

  ELISA實驗:標準品稀釋步驟指南

  本生(BUNSEN)為您詳細講解ELISA實驗中稀釋標準品的關鍵步驟和注意事項。這是實驗成功與否的基石,精確的稀釋決定了標準曲線的質量,從而直接影響最終結果的準確性。

  一、核心原則

  標準品稀釋的目的是創建一系列已知濃度的標準點,用以繪制標準曲線(通常為S型或線性化后的直線)。未知樣本的濃度將通過此曲線計算得出。因此,稀釋的精確性和一致性至關重要。

  二、實驗前準備

  試劑與材料:

  標準品凍干粉:從冰箱中取出,室溫靜置15-20分鐘平衡至室溫。

  標準品/樣本稀釋液:務必使用試劑盒指定的專用稀釋液。不同的檢測目標(細胞因子、激素等)可能需要不同的基質(如血清、血漿模擬液),以避免干擾。

  去離子水或超純水:用于復溶凍干粉。

  無菌離心管(1.5mL EP管)、試管或細胞培養板(用于系列稀釋)。

  精確的可調移液器(如P1000, P200, P20)及匹配的、潔凈的低吸附吸頭。

  渦旋混合器 和 小型離心機。


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  說明書:

  仔細閱讀試劑盒說明書,確認標準品的初始濃度(如 1000 pg/mL)和需要復溶的體積(如 500 μL)。

  確認說明書建議的標準曲線濃度范圍(如 7.8 pg/mL - 500 pg/mL)和稀釋倍數。常見的梯度是倍比稀釋(Serial Dilution)。

  三、操作步驟

  第一步:復溶

  離心:將標準品凍干粉管短暫離心(如 3000 rpm, 1分鐘),使粉末集中到管底,避免開蓋時損失。

  加液:加入說明書指定體積的去離子水或指定的復溶液。

  混勻:輕輕渦旋(避免產生過多氣泡)或上下吹打至少1分鐘,確保粉末溶解。切勿劇烈振蕩。

  靜置:室溫靜置10分鐘,使其充分水化。此時溶液的濃度即為最高濃度儲備液(Stock Solution)。

  第二步:配制最高濃度點

  取一個潔凈試管,加入一定體積的稀釋液(例如 900 μL)。

  吸取一定體積的復溶后的標準品儲備液(例如 100 μL)加入稀釋液中。

  輕輕渦旋或吹打混勻。此管濃度即為標準曲線的最高濃度點(例如,1000 pg/mL儲備液稀釋10倍,得到 100 pg/mL的最高點)。

  示例:若儲備液為1000 pg/mL,要配制500 pg/mL的最高點,可采取1:1稀釋(如500μL儲備液 + 500μL稀釋液)。

  第三步:系列倍比稀釋

  這是最關鍵的一步。以制備7個濃度點為例(從最高濃度點開始稀釋):

  取7-8個排在一起的試管或孔板,除第一管外,每管加入等體積的稀釋液(例如 300 μL)。

  第1管:加入與稀釋液等體積的“最高濃度點"溶液(例如 300 μL),此時第1管濃度即為最高濃度(如 100 pg/mL)。

  第2管:從第1管中吸取等體積液體(例如 300 μL),移至第2管中。輕輕吹打或渦旋混勻。

  后續管:重復此過程:從第2管取 300 μL 加入第3管,混勻;從第3管取 300 μL 加入第4管,混勻……直至稀釋到最后一管。

  最后一管:從最后一管(濃度點)中吸取 300 μL 液體并棄去,以保證所有管的體積一致。

  四、關鍵注意事項(本生提醒您)

  低溫操作:對于非常不穩定的蛋白,整個稀釋過程請在冰上進行,并使用預冷的稀釋液和器具。

  避免吸附:使用低吸附的移液器吸頭和試管,以減少蛋白在管壁上的損失,這對于低濃度點尤其重要。

  充分混勻:每一次轉移后都必須充分混勻,這是保證梯度準確性的關鍵。但需避免產生氣泡。

  更換吸頭!每一步稀釋都必須使用新的無菌吸頭,否則會污染后續所有濃度,導致實驗失敗。

  及時使用:稀釋好的標準品應盡快加入酶標板孔中,通常建議在30分鐘內使用。

  設置復孔:加樣時,每個濃度點建議做2-3個復孔,以提高數據的可靠性。

  通過遵循以上步驟,您將能制備出一條準確、可靠的標準曲線,為整個ELISA實驗的成功奠定堅實基礎。

  注:僅供科研使用,以上資料供參考,如需具體產品說明請咨詢技術老師或品牌供應商。

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